បរិភោគ។ Chudinova, V.A. Platonov, A.V. អាឡិចសាន់ដ្រូវ៉ា, S.N. អេឡានស្គី
ថ្មីៗនេះ វាត្រូវបានបង្ហាញថា ផ្សិត ascomycete Ilyonectria crassa មានសមត្ថភាពវាយប្រហារមើមដំឡូង។ ការងារនេះជាលើកដំបូងដើម្បីវិភាគលក្ខណៈជីវសាស្រ្ត និងភាពធន់ទ្រាំទៅនឹងថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតជាក់លាក់នៃប្រភេទ I. crassa ដែលដាច់ចេញពីដំឡូង។ លំដាប់នៃតំបន់ជាក់លាក់នៃពូជ "ដំឡូង" ស្របគ្នាជាមួយនឹងអ្នកដែលទទួលបានមុនសម្រាប់ផ្សិតដែលដាច់ឆ្ងាយពីឫសនៃ narcissus, ginseng, aspen និង beech, អំពូល Lily និងស្លឹក tulip ។ ជាក់ស្តែង រុក្ខជាតិព្រៃ និងសួនច្បារជាច្រើនអាចត្រូវបានបម្រុងទុកសម្រាប់ I. crassa ។ ការសិក្សាបានឆ្លងមេរោគចំណិតប៉េងប៉ោះ និងដំឡូង ប៉ុន្តែមិនបានឆ្លងផ្លែប៉េងប៉ោះទាំងមូល ឬមើមដំឡូងដែលនៅដដែលនោះទេ។ នេះបង្ហាញថា I. crassa គឺជាប៉ារ៉ាស៊ីតមុខរបួស។ ការវាយតម្លៃនៃភាពធន់នឹង fludioxonil, difenoconazole និង azoxystrobin នៅលើឧបករណ៍ផ្ទុកសារធាតុចិញ្ចឹមបានបង្ហាញពីប្រសិទ្ធភាពខ្ពស់នៃថ្នាំទាំងនេះ។
សូចនាករ EC50 (កំហាប់ថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតដែលថយចុះ 2 ដងនៃអត្រាកំណើនរ៉ាឌីកាល់នៃអាណានិគមដែលទាក់ទងទៅនឹងការគ្រប់គ្រងមិនមែនផ្សិត) គឺស្មើនឹង 0.4; 7.4 និង 4 mg/l រៀងគ្នា។ លទ្ធភាពនៃការវិវត្តទៅជាជំងឺដែលបង្កឡើងដោយ I. crassa គួរតែត្រូវបានគេយកមកពិចារណានៅពេល phytopathologically វាយតម្លៃមើមដំឡូង និងបង្កើតវិធានការការពាររុក្ខជាតិ។
ការអភិវឌ្ឍនៃអតិសុខុមប្រាណ phytopathogenic នាំឱ្យមានការខាតបង់ខ្ពស់នៅគ្រប់ដំណាក់កាលនៃការដាំដុះ និងការផ្ទុកដំឡូង។ នៅពេលរៀបចំផែនការ វិធានការការពារ ជាក្បួន ភ្នាក់ងារបង្កជំងឺល្បីត្រូវបានគេយកមកពិចារណា ដូចជាប្រភេទពពួក Alternaria, Fusarium, Phoma, Helminthosporium, Colletotrichum, Phytophthora ជាដើម។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ក្នុងប៉ុន្មានឆ្នាំថ្មីៗនេះ របាយការណ៍កាន់តែច្រើនឡើងបានលេចចេញមក។ អំពីការលេចឡើងនៃមីក្រូសរីរាង្គ phytopathogenic ថ្មីនៅលើដំឡូង។ ជីវវិទ្យារបស់ពួកគេត្រូវបានសិក្សាយ៉ាងលំបាក ប្រសិទ្ធភាពនៃថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតដែលប្រើលើដំឡូងបារាំងមិនត្រូវបានគេដឹងទេ ហើយវិធីសាស្ត្រវិនិច្ឆ័យមិនត្រូវបានបង្កើតឡើងទេ។ នៅពេលអភិវឌ្ឍជាទ្រង់ទ្រាយធំ ពួកវាមានសមត្ថភាពបង្កការខូចខាតយ៉ាងសំខាន់ដល់ដំណាំដំឡូង។ អតិសុខុមប្រាណមួយក្នុងចំណោមអតិសុខុមប្រាណទាំងនេះគឺផ្សិត ascomycete Ilyonectria crassa (Wollenw.) A. Cabral & Crous ដែលត្រូវបានរកឃើញដំបូងដោយអ្នកនិពន្ធនៅលើមើមដំឡូង (Chudinova et al., 2019) ។
ឯកសារនេះបង្ហាញពីលទ្ធផលនៃការវិភាគនៃសំពាធ I. crassa ដែលដាច់ចេញពីមើមដំឡូង។ សរីរវិទ្យានៃអាណានិគម និងរចនាសម្ព័ន្ធ mycelial នៃ I. crassa លំដាប់នុយក្លេអូទីតនៃផ្នែក DNA ជាក់លាក់នៃប្រភេទ មេរោគចំពោះដំឡូង និងប៉េងប៉ោះ និងភាពធន់ទ្រាំទៅនឹងថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតដ៏ពេញនិយមមួយចំនួនត្រូវបានសិក្សា។
សំភារៈនិងវិធីសាស្រ្ត
សំពាធដែលប្រើក្នុងការងារនេះគឺ I. crassa 18KSuPT2 ដាច់ដោយឡែកក្នុងឆ្នាំ 2018 ពីមើមដំឡូងដែលមានមេរោគដាំដុះនៅក្នុងតំបន់ Kostroma ។ មើមត្រូវបានរងផលប៉ះពាល់ដោយការរលួយស្ងួតជាមួយនឹងបែហោងធ្មែញគ្របដណ្តប់ដោយ mycelium ពណ៌ត្នោតស្រាល។ ដោយប្រើម្ជុលមាប់មគ ផ្សិត mycelium ត្រូវបានផ្ទេរទៅក្នុងចាន Petri ជាមួយនឹងឧបករណ៍ផ្ទុក agar (ស្រាបៀរ wort 10%, agar 1.5%, penicillin 1000 units/ml) ។ ចានត្រូវបាន incubated នៅទីងងឹតនៅ 24 ° C ។
សម្រាប់ការថតរូប ការវាយតម្លៃនៃទំហំ និងសរីរវិទ្យានៃ spores និង sporulation សរីរាង្គ មីក្រូទស្សន៍ពន្លឺ Leica DM2500 ជាមួយនឹងកាមេរ៉ាឌីជីថល ICC50 HD និងមីក្រូទស្សន៍កែវយឹត Leica M80 ដែលមានកាមេរ៉ាឌីជីថល IC80HD (Leica Microsystems ប្រទេសអាល្លឺម៉ង់) ត្រូវបានប្រើប្រាស់។
ដើម្បីញែក DNA ផ្សិត mycelium ត្រូវបានដាំដុះក្នុងឧបករណ៍ផ្ទុកពារាំងរាវ បន្ទាប់មកត្រូវបានបង្កកក្នុងអាសូតរាវ ធ្វើឱ្យដូចគ្នា ភ្ញាស់នៅក្នុងសតិបណ្ដោះអាសន្ន CTAB បន្សុតជាមួយក្លរ៉ូហ្វម ហើយលាងពីរដងជាមួយនឹងជាតិអាល់កុល 2% ។
វិធីសាស្រ្តទាញយក DNA ត្រូវបានពិពណ៌នាលម្អិតនៅក្នុងអត្ថបទដោយ Kutuzova et al ។ (2017)។
ដើម្បីកំណត់អត្តសញ្ញាណប្រភេទសត្វដោយវិធីសាស្ត្រម៉ូលេគុល និងការប្រៀបធៀបជាមួយប្រភេទ I. crassa ដែលគេស្គាល់ផ្សេងទៀត PCR ត្រូវបានអនុវត្តជាមួយ primers ដែលអនុញ្ញាតឱ្យពង្រីកតំបន់ DNA ជាក់លាក់នៃប្រភេទសត្វ៖ ITS1-5,8S-ITS2 (primers ITS5/ITS4, White et al., 1990) តំបន់នៃហ្សែន b -tubulin (Bt2a/Bt2b, Glass and Donaldson, 1995) និងកត្តាពន្លូតការបកប្រែ 1α (tef1α) (primers EF1-728F/EF1-986R, Carbone and Kohn, 1999)។ Amplicons នៃប្រវែងដែលត្រូវការត្រូវបានស្រង់ចេញពីជែលដោយប្រើឧបករណ៍ CleanUp ពី Evrogen ។ តំបន់ពង្រីកត្រូវបានបន្តបន្ទាប់គ្នាដោយប្រើ BigDye®Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit (Applied Biosystems, CA, USA) នៅលើ Applied Biosystems 3730 xl automated sequencer (Applied Biosystems, CA, USA)។ លំដាប់នុយក្លេអូទីតដែលទទួលបានត្រូវបានប្រើដើម្បីស្វែងរកការផ្គូផ្គងនៅក្នុងមូលដ្ឋានទិន្នន័យ GenBank នៃមជ្ឈមណ្ឌលជាតិសម្រាប់ព័ត៌មានជីវបច្ចេកវិទ្យាអាមេរិក (NCBI) ។ ការវិភាគជីវសាស្ត្រត្រូវបានអនុវត្តដោយប្រើកម្មវិធី MEGA 6 (Tamura et al ។ , 2013) ។
ការកំណត់មេរោគត្រូវបានធ្វើឡើងលើផ្លែឈើបៃតងទាំងមូលនៃផ្លែប៉េងប៉ោះធំ (ពូជ Dubrava) និងមើមដំឡូង (ពូជ Gala)។ លើសពីនេះទៀត ដើម្បីក្លែងធ្វើការខូចខាតផ្លែឈើ និងមើមដែលខូច ចំណិតនៃផ្លែឈើ និងមើមដូចគ្នាត្រូវបានគេប្រើ។ ចំណិតមើមត្រូវបានដាក់ក្នុងបន្ទប់សើម ដែលជាចាន Petri ជាមួយនឹងក្រដាសតម្រងសើមនៅខាងក្រោម។ ស្លាយកញ្ចក់មួយត្រូវបានគេដាក់នៅលើក្រដាស ដែលជាផ្នែកមួយនៃមើម ឬផ្លែឈើត្រូវបានគេដាក់។ មើម និងផ្លែឈើទាំងមូលក៏ត្រូវបានដាក់ក្នុងធុងដែលមានក្រដាសតម្រងសើមនៅខាងក្រោម។ បំណែកនៃ agar (5 × 5 mm) ជាមួយ hyphae ផ្សិតត្រូវបានដាក់នៅកណ្តាលនៃចំណិត (ឬនៅលើផ្ទៃនៅដដែលនៃមើមឬផ្លែឈើ) ជាមួយ hyphae ផ្សិតបន្ទាប់ពី 5 ថ្ងៃនៃការដាំដុះនៅលើ wort agar ។
ភាពធន់នៃពូជផ្សិតចំពោះថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតត្រូវបានវាយតម្លៃក្នុងលក្ខខណ្ឌមន្ទីរពិសោធន៍លើឧបករណ៍ផ្ទុកសារធាតុចិញ្ចឹម agar ។ យើងបានសិក្សាពីភាពងាយទទួលថ្នាំសម្លាប់មេរោគ Maxim, KS (សារធាតុសកម្ម fludioxonil, 25 g/l), Quadris, KS (azoxystrobin 250 g/l), Skor, CE (difenoconazole 250 g/l) (កាតាឡុករបស់រដ្ឋ..., 2020 ) ការវាយតម្លៃត្រូវបានអនុវត្តនៅក្នុងចាន Petri នៅលើឧបករណ៍ផ្ទុក wort-agar ជាមួយនឹងការបន្ថែមថ្នាំដែលបានសិក្សានៅកំហាប់នៃសារធាតុសកម្មនៃ 0.1; 1; 10 ppm (mg/l) (សម្រាប់ fludioxonil និង difenoconazole), 1; ១០; 10 ppm (សម្រាប់ azoxystrobin) និងនៅលើឧបករណ៍ផ្ទុកដោយគ្មាន fungicide (ការគ្រប់គ្រង) ។ ថ្នាំសំលាប់មេរោគត្រូវបានបន្ថែមទៅកន្លែងរលាយនិងត្រជាក់ដល់ 100 ° C មធ្យមបន្ទាប់មកឧបករណ៍ផ្ទុកត្រូវបានចាក់ចូលទៅក្នុងចាន Petri ។ ប្លុក agar ជាមួយ mycelium ផ្សិតត្រូវបានដាក់នៅកណ្តាលនៃចាន Petri និងដាំដុះនៅសីតុណ្ហភាព 60 ° C នៅក្នុងទីងងឹត។ បន្ទាប់ពី 24 ថ្ងៃនៃការ incubation, អង្កត់ផ្ចិតនៃអាណានិគមត្រូវបានវាស់ជាពីរទិសកាត់កែងគ្នាទៅវិញទៅមក; លទ្ធផលរង្វាស់សម្រាប់អាណានិគមនីមួយៗត្រូវបានគិតជាមធ្យម។ ការពិសោធន៍ត្រូវបានអនុវត្តជាបីដង។ ដោយផ្អែកលើលទ្ធផលតេស្ត សន្ទស្សន៍ EC7 ត្រូវបានគណនា ស្មើនឹងកំហាប់ថ្នាំសម្លាប់ផ្សិត ដែលកាត់បន្ថយអត្រាកំណើនរ៉ាឌីកាល់ពាក់កណ្តាលនៃអាណានិគមដែលទាក់ទងទៅនឹងការគ្រប់គ្រងមិនមែនផ្សិត។
លទ្ធផលនិងការពីភាក្សា
នៅលើចាន Petri ជាមួយ wort agar ផ្សិតបានបង្កើតអាណានិគមជាមួយ mycelium ពណ៌ស។ ឧបករណ៍ផ្ទុកនៅក្រោម mycelium ប្រែទៅជាពណ៌ក្រហមត្នោត។ នៅពេលដែលមធ្យមស្ងួត ផ្សិតបានបង្កើតជា spores ពីរប្រភេទនៅលើ conidiophores តែមួយ ហើយពួកវាត្រូវបានប្រមូលផ្តុំទៅជា sporodochium តូច។ Macroconidia ត្រូវបានពន្លូត រាងស៊ីឡាំង ពីមួយទៅបី septa ប្រវែងជាមធ្យម 27.2 µm ជាមួយនឹងជួរតម្លៃពី 23.2 ដល់ 32.2 µm ទទឹង - រហូតដល់ 4.9 µm (រូបភាព 1) ។ ប្រវែងមធ្យមនៃ microconidia គឺ 14.3 µm ជាមួយនឹងជួរតម្លៃពី 10.3 ទៅ 18.1 µm ទទឹង - រហូតដល់ 4.0 µm ។ តួអក្សរម៉ាក្រូ និងអតិសុខុមប្រាណទាំងអស់ស្ថិតនៅក្នុងជួរនៃការប្រែប្រួលនៃប្រភេទ Ilyonectria crassa (Cabral et al., 2012)។
លំដាប់នៃតំបន់ DNA ជាក់លាក់នៃប្រភេទសត្វ (ITS, b-tubulin, TEF 1α) ស្របគ្នាទាំងស្រុងជាមួយនឹងលំដាប់នៃប្រភេទ I. crassa ដែលយើងសិក្សាពីមុន (Chudinova et al., 2019, Table 1)។ ដើម្បីសិក្សាពីប្រេវ៉ាឡង់នៃ I. crassa នៅក្នុងតំបន់ផ្សេងទៀត និងវិភាគវិសាលគមនៃដំណាំដែលរងផលប៉ះពាល់ លំដាប់ DNA ស្រដៀងគ្នាត្រូវបានវិភាគនៅក្នុងមូលដ្ឋានទិន្នន័យ GenBank (តារាងទី 1) ។ ការត្រួតស៊ីគ្នាមានចាប់ពី 86 ទៅ 100% ។ លំដាប់នៃតំបន់ DNA ទាំងបីនៃពូជ "ដំឡូង" នៃ I. crassa គឺដូចគ្នាបេះបិទទៅនឹងលំដាប់នៃពូជដែលដាច់ចេញពីអំពូល Lily និងឫស narcissus នៅប្រទេសហូឡង់ និងពីឫសយិនស៊ិននៅប្រទេសកាណាដា។ យើងមិនអាចរកឃើញ I. crassa strains ផ្សេងទៀតជាមួយនឹងចំនួនបីដែលបានវិភាគលំដាប់ស្រដៀងគ្នានៅក្នុងមូលដ្ឋានទិន្នន័យបើកចំហ។ ទោះបីជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ការវិភាគនៃលំដាប់ ITS និង b-tubulin ដែលត្រូវបានតម្កល់បង្ហាញវត្តមានរបស់ I. crassa នៅលើស្លឹក tulip ក្នុងចក្រភពអង់គ្លេស។ ផ្សិតដែលមានលំដាប់ ITS ស្រដៀងគ្នាត្រូវបានគេកំណត់អត្តសញ្ញាណនៅពេលវិភាគ mycobiota នៃឫស aspen នៅក្នុងប្រទេសកាណាដា និងដើមប៊ីចនៅក្នុងប្រទេសអ៊ីតាលី និងមើមដំឡូងនៅអារ៉ាប៊ីសាអូឌីត (តារាងទី 1) ។ លទ្ធផលនៃការសិក្សានេះបង្ហាញថា I. crassa មានការចែកចាយជាសកល និងមានសមត្ថភាពវាយប្រហារប្រភេទរុក្ខជាតិផ្សេងៗគ្នា។
នៅពេលកំណត់ការបង្ករោគនៅលើចំណិតប៉េងប៉ោះ និងដំឡូងនៅថ្ងៃទី 5 អង្កត់ផ្ចិតនៃដំបៅឈានដល់ 1.5 សង់ទីម៉ែត្រ។ ក្នុងពេលជាមួយគ្នានោះ មេរោគដែលបានសិក្សាមិនឆ្លងផ្លែប៉េងប៉ោះទាំងមូល ឬមើមដំឡូងដែលនៅដដែលនោះទេ។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ការខូចខាតដល់សរសៃផ្កាត្រូវបានគេសង្កេតឃើញនៅលើប៉េងប៉ោះ។ ដើម្បីមិនរាប់បញ្ចូលលទ្ធភាពនៃការចម្លងរោគ ផ្សិតមួយត្រូវបានញែកដាច់ដោយឡែកពីគ្នាទៅជាវប្បធម៌សុទ្ធពី mycelium ដែលបង្កើតឡើងនៅលើចំណែកមើមដំឡូង។ វាគឺដូចគ្នាបេះបិទទាំងស្រុងទៅនឹងសំពាធមេ។ I. crassa ហាក់ដូចជាប៉ារ៉ាស៊ីតមុខរបួស។
ការព្យាបាលមុនដាំមើមគ្រាប់ពូជជាមួយថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតអាចកាត់បន្ថយការវិវត្តនៃជំងឺលើរុក្ខជាតិក្នុងរដូវដាំដុះ។ ដើម្បីជ្រើសរើសថ្នាំសម្លាប់ផ្សិតដែលមានប្រសិទ្ធភាព វាចាំបាច់ក្នុងការវាយតម្លៃថាតើថ្នាំមួយណាមានប្រសិទ្ធភាពប្រឆាំងនឹង I. crassa ។ ការងារនេះបានសិក្សាយ៉ាងទូលំទូលាយនូវសារធាតុសកម្មនៃថ្នាំសម្លាប់ផ្សិត - fludioxonil, azoxystrobin, difenoconazole ។ Fludioxonil គឺជាផ្នែកមួយនៃការត្រៀមលក្ខណៈចម្រុះជាច្រើនដែលប្រើដើម្បីព្យាបាលគ្រាប់ពូជ និងមើមគ្រាប់ពូជមុនពេលដាំ។ Fludioxonil (Maxim) ក៏ត្រូវបានគេប្រើដើម្បីព្យាបាលមើមគ្រាប់ពូជមុនពេលរក្សាទុក។ Difenoconazole និង azoxystrobin ក៏ត្រូវបានរួមបញ្ចូលផងដែរនៅក្នុងការត្រៀមលក្ខណៈមួយចំនួនដែលប្រើសម្រាប់កែច្នៃសម្ភារៈគ្រាប់ពូជ ក៏ដូចជានៅក្នុងការត្រៀមរៀបចំសម្រាប់ដំណើរការរុក្ខជាតិលូតលាស់ (កាតាឡុករបស់រដ្ឋ..., 2020)។
អត្រាកំណើននៃ I. crassa ត្រូវបានសិក្សាលើប្រព័ន្ធផ្សព្វផ្សាយ (រូបភាពទី 2) ជាមួយនឹងកំហាប់ផ្សេងគ្នានៃសារធាតុសកម្ម៖ fludioxonil (EC50 = 0.4 ppm), azoxystrobin (EC50 = 4 ppm) និង difenoconazole (EC50 = 7.4 ppm) (តារាង 2) . ថ្នាំទាំងនេះអាចត្រូវបានចាត់ទុកថាមានប្រសិទ្ធភាពខ្ពស់ប្រឆាំងនឹង I. crassa ចាប់តាំងពី EC50 របស់ពួកគេគឺទាបជាងកំហាប់ថ្នាំដែលបានណែនាំនៅក្នុងសារធាតុរាវការងារដែលត្រូវបានប្រើដើម្បីព្យាបាលមើម។ យោងតាមកាតាឡុករបស់រដ្ឋ ... (2020) កំហាប់ fludioxonil ក្នុងអង្គធាតុរាវសម្រាប់ព្យាបាលមើមដំឡូងមានចាប់ពី 500 ទៅ 1000 ppm, azoxystrobin (ក្នុងអង្គធាតុរាវសម្រាប់ព្យាបាលបាតចង្អូរ) - 3750–9375 ppm, difenoconazole (ក្នុងរាវសម្រាប់ព្យាបាលរុក្ខជាតិលូតលាស់) - 187.5-625 ppm ។
តារាងទី 1. ភាពស្រដៀងគ្នានៃលំដាប់រវាងប្រភេទជាក់លាក់នៃប្រភេទ strains 18KSuPT2 និង Ilyonectria crassa ដែលមាននៅក្នុងមូលដ្ឋានទិន្នន័យ Genbank
ប៉ះពាល់ | រោងចក្រម្ចាស់ផ្ទះ, កន្លែងបញ្ចេញចោល | លេខលំដាប់ដែលដាក់ក្នុង GenBank ភាគរយនៃភាពស្រដៀងគ្នា | តំណភ្ជាប់ | ||
អាយធី | β-tubulin | TEF 1α | |||
17KSPT1 និង 18KSuPT2 | មើមដំឡូង តំបន់ Kostroma ។ | MH818326 | MH822872 | MK281307 | Chudinova et al ។ , 2019, ការងារនេះ។ |
CBS 158/31 | ឫស Narcissus ប្រទេសហូឡង់ | JF735276 100 | JF735394 100 | JF735724 99.3 | Cabral et al ។ , 2012 |
CBS 139/30 | អំពូល Lily ប្រទេសហូឡង់ | JF735275 100 | JF735393 99.7 | JF735723 99.3 |
|
NSAC-SH-1 | ឫសយិនស៊ិន ប្រទេសកាណាដា | អេ .១៦៧១ 99.4 | JF735395 100 | JF735/725 99.6 |
|
អេសអេស ២៣៥១៣៨ | ស្លឹក Tulip ចក្រភពអង់គ្លេស | KJ475469 100 | KJ513266 100 | អិន | Denton, Denton, 2014 |
MT294410 | ឫស Aspen ប្រទេសកាណាដា | MT294410 100 | អិន | អិន | Ramsfield et al ។ , 2020 |
ER1937 | Buc ប្រទេសអ៊ីតាលី | ៥៣៧៤៤៤ 99.65 | អិន | អិន | Tizzani, Haegi, Motta ។ ការដាក់ស្នើដោយផ្ទាល់ |
KAUF19 | មើមដំឡូង អារ៉ាប៊ីសាអូឌីត | HE649390 98.3 | អិន | អិន | Gashgari, Gherbawy, 2013 |
ND = មិនបានដាក់ប្រាក់
តារាងទី 2. ភាពធន់របស់ Ilyonectria crassa ទៅនឹងថ្នាំសម្លាប់ផ្សិត
(សារធាតុសកម្ម) | EC50, ppm | ||||
3 ថ្ងៃ | 5 ថ្ងៃ | 7 ថ្ងៃ | |||
ការត្រួតពិនិត្យ | 17 ± 2 | 33 ± 5 | 47 ± 3 | ||
Quadris, KS (fzoxystrobin) | 18 ± 1 | 34 ± 2 | 48 ± 2 | ||
11 ± 1 | 11 ± 1 | 12 ± 1 | |||
11 ± 1 | 11 ± 1 | 12 ± 1 | |||
Maxim, KS (Fludioxonil) | 16 ± 1 | 28 ± 2 | 48 ± 2 | ||
7 ± 1 | 13 ± 3 | 19 ± 4 | |||
5 ± 1 | 12 ± 1 | 17 ± 5 | |||
ពិន្ទុ EC (difenoconazole) | 18 ± 1 | 35 ± 2 | 48 ± 1 | ||
11 ± 1 | 24 ± 3 | 35 ± 4 | |||
11 ± 1 | 13 ± 1 | 17 ± 3 |
នៅក្នុងការងាររបស់យើង ពូជ I. crassa ត្រូវបានញែកចេញពីមើមដំឡូងនៅតំបន់ Kostroma និង Moscow (Chudinova et al., 2019)។ សមាមាត្រខ្ពស់នៃប្រភេទផ្សិតដែលមានលំដាប់ ITS ដូចគ្នាបេះបិទទៅនឹង I. crassa ត្រូវបានគេកំណត់អត្តសញ្ញាណនៅពេលវិភាគ mycobiota នៃមើមដំឡូងនៅប្រទេសអារ៉ាប៊ីសាអូឌីត (Gashgari and Gherbawy, 2013)។ ជាក់ស្តែង I. crassa មិនកម្រមាននៅលើដំឡូងដូចដែលវាហាក់ដូចជានោះទេ។ ការពិសោធន៍របស់យើងបានបង្ហាញថាផ្សិតអាចឆ្លងទៅផ្លែឈើប៉េងប៉ោះដែលខូច។ វាត្រូវបានគេស្គាល់ពីអក្សរសិល្ប៍ថា I. crassa មានសមត្ថភាពអភិវឌ្ឍ saprotrophically នៅក្នុងដី (Moll et al ។ , 2016) ហើយក៏បានឆ្លងនូវរុក្ខជាតិជាច្រើនប្រភេទផងដែរ សូម្បីតែរុក្ខជាតិដែលនៅឆ្ងាយក្នុងន័យវចនានុក្រមដូចជា daffodils, Lily, ginseng, aspen និង beech (តារាងទី 1) ។ ជាក់ស្តែង រុក្ខជាតិព្រៃ និងសួនច្បារជាច្រើនអាចត្រូវបានបម្រុងទុកសម្រាប់ I. crassa ។ ខាងលើបង្ហាញថានៅពេលបង្កើតវិធានការការពារវាចាំបាច់ដើម្បីយកទៅក្នុងគណនីលទ្ធភាពនៃការខូចខាតមើមដំឡូងដោយផ្សិតនេះ។ ការត្រៀមលក្ខណៈដែលត្រូវបានប្រើប្រាស់យ៉ាងទូលំទូលាយសម្រាប់ព្យាបាលមើមដំឡូងដែលមានផ្ទុក fludioxonil, azoxystrobin និង difenoconazole បានបង្ហាញពីប្រសិទ្ធភាពខ្ពស់នៃផ្សិតប្រឆាំងនឹង I. crassa ។
ការងារនេះត្រូវបានគាំទ្រដោយមូលនិធិរុស្ស៊ីសម្រាប់ការស្រាវជ្រាវមូលដ្ឋាន (ជំនួយឥតសំណងលេខ 20-016-00139) ។
អត្ថបទនេះត្រូវបានបោះពុម្ពនៅក្នុងទិនានុប្បវត្តិ "ព្រឹត្តិបត្រនៃការការពាររុក្ខជាតិ" ឆ្នាំ 2020 ទំព័រ 103(3)